Erzeugung von Krankheitszuständen durch das Experiment

Inhaltsverzeichnis

• Erzeugung von Infektionen durch Pseudomonadaceae und Achromobacteraceae.
• I. Klassifizierung der Familien Pseudomonadaceae und Achromobacteraceae (Auszug aus Bergey’s Manuel).
• 1. Familie Pseudomonadaceae Winslow u. Mitarb. 1917.
• 2. Familie Achromobacteraceae Breed 1945.
• II. Neuere Gesichtspunkte zur Klassifizierung nach Erscheinen der letzten Auflage von Bergey’s Manual.
• Hauptteil.
• I. Die Bakterien der Familien Pseudomonadaceae und Achromobacteraceae als Krankheitserreger.
• 1. Familie Pseudomonadaceae.
• a) Pseudomonas aeruginosa.
• b) Pseudomonas pseudomallei.
• c) Pseudomonas reptilivora.
• d) Pseudomonas fluorescens liquefaciens.
• e) Aeromonas hydrophila.
• f) Aeromonas salmonicida.
• g) Plesiomonas (Aeromonas) shigelloides.
• 2. Familie Achromobacteraceae.
• a) Genus Alcaligenes.
• b) Genus Achromobacter.
• c) Genus Flavobacterium.
• II. Experimentelle Infektionen mit Bakterien der Familie Pseudomonadaceae.
• c) Aeromonas hydrophila.
• d) Aeromonas salmonicida.
• e) Plesiomonas shigelloides.
• III. Studien mit Toxinen von Bakterien der Familie Pseudomonadaceae.
• b) Aeromonas hydrophila.
• c) Pseudomonas pseudomallei.
• IV. Experimentelle Untersuchungstechnik an Pflanzen.
• 1. Pathogenitätsprüfungen.
• 2. Experimentelle Untersuchungen zur Blattfleckenkrankheit.
• 3. Experimentelle Untersuchungen zur Naßfäule.
• 4. Experimentelle Untersuchungen zur Fliederseuche.
• 5. Tracheobakteriosen.
• 6. Künstliche Infektionen an älteren Trieben.
• 7. Infektionsverfahren zur Feststellung der Resistenz bzw. Anfälligkeit verschiedener Bohnensorten.
• a) Tauchverfahren nach Stapp (1956).
• b) Freilandverfahren nach Böning (1936).
• c) Infiltrationsverfahren nach Waltz, Gassner u. Schwartz (1956).
• 8. Allgemeine Richtlinien.
• V. Familie Achromobacteraceae.
• 1. Genus Alcaligenes.
• 2. Genus Achromobacter.
• 3. Genus Flavobacterium.
• Literatur.
• Das Tierexperiment mit tierpathogenen Corynebakterien.
• Genus I. Corynebacterium.
• I. C. diphtheriae.
• A. Wesen der Krankheit.
• B. Eigenschaften des C. diphtheriae.
• C. Tierexperiment.
• 1. Meerschweinchen.
• 2 Kaninchen.
• 3. Weiße Ratte.
• 4. Weiße Maus.
• 5. Goldhamster (Cricetus auratus).
• 6. Ziesel (Citellus citellus L.).
• 7. Hühnerembryo.
• 8. Pferd.
• 9. Rind, Schaf.
• II. C. pseudotuberculosis (ovis).
• A. Eigenschaften.
• B. Tierexperiment.
• III. C. pyogenes.
• 1. Kaninchen.
• 2. Weiße Laboratoriumsmaus.
• 3. Meerschweinchen.
• 4. Goldhamster.
• 5. Rind.
• IV. C. murisepticum und C. kutscheri.
• V. C. renale.
• 1. Weiße Maus.
• 2. Kaninchen.
• VI. C. equi.
• Genus II. Listeria.
• A. Listeriose als Krankheit.
• B. Eigenschaften des Erregers.
• Keimzahlbestimmung.
• Versuchstierarten.
• 2. Meerschweinchen.
• 3. Chinchilla, Goldhamster.
• 4. Maus.
• 5. Ratte.
• 6. Huhn, Brutei.
• 7. Schaf, Ziege.
• 8. Hund, Katze und Affen.
• Genus III. Erysipelothrix.
• A. Vorkommen.
• B. Eigenschaften.
• 1. Weiße Laboratoriumsmaus.
• 2. Andere Mäusearten.
• 3. Weiße Laboratoriumsratte.
• 4. Syrische Hamster (Goldhamster, Cricetus auratus).
• 5 Kaninchen.
• 6. Haussperling (Passer domesticus L.).
• 7. Huhn.
• 8. Bebrütetes Hühnerei.
• 9. Taube.
• 10. Schwein.
• 11. Pferd.
• Krankheiten durch Bartonellaceae.
• I. Bartonella bacilliformis.
• 1. Krankheitsbild.
• 2. Pathogenese und Pathologie.
• 3. Therapie.
• 4. Experimentelle Übertragung.
• 5. Übertragung durch Arthropoden.
• II. Tierbartonellen.
• III. Haemobartonella muris (Mayer 1921).
• 2. Verlauf der Infektion.
• 3. Pathogenese und Pathologie.
• 4. Milzeinfluß.
• 5. Therapie.
• 6. Experimentelle Übertragung.
• a) Übertragung auf entmilzte Ratten.
• b) Übertragung auf normale Ratten.
• c) Zweitinfektion von Ratten.
• d) Übertragung auf andere Tiere.
• e) Übertragung durch Arthropoden.
• 7. Gegenseitige Beeinflussung von Rattenbartonellosis und anderen Krankheitszuständen.
• IV. Eperythrozoon coccoides (Schilling, Dinger 1928).
• 1. Verlauf der Infektion.
• 2. Therapie.
• 3. Experimentelle Übertragung.
• a) Auf entmilzte Mäuse.
• b) Auf andere Tiere.
• c) Auf Hühnerembryonen.
• d) Übertragung durch Arthropoden.
• 4. Gegenseitige Beeinflussung der Eperythrozoonose der Maus und anderer Krankheitszustände.
• V. Haemobartonella muris-musculi (Schilling 1929).
• VI. Haemobartonella canis (Kikuth 1928).
• 1. Krankheitsbild und Verlauf der Infektion.
• 5. Gegenseitige Beeinflussung von H. canis und anderen Krankheitszuständen.
• VIT. Eperythrozoon ovis (Neitz, Alexander und Du Torr 1934).
• VIII. Eperythrozoon wenyoni (Adler und Ellenbogen, Neitz und Quinlan 1934).
• IX. Eperythrozoon suis (Splitter und Williamson 1950).
• X. Eperythrozoon parvum (Splitter 1950a).
• XI. Eperythrozoon fells (Clark 1942).
• XII SchluBbemerkungen.
• Experimentelle Erzeugung von Krankheiten durch Salmonellen und Shigellen.
• I. Einleitung.
• Zusammenfassende Darstellungen in Lehr- und Handbüchern, Monographien und Laboratoriumsbüchern.
• II. Experimentelle Erzeugung von Krankheiten durch Salmonellen.
• A. Grundlagen.
• B. Methodik.
• 1. Herkunft und Haltung von Salmonellastämmen.
• 2. Vorbereitung der Infektionsdosis.
• a) Züchtung.
• b) Quantitative Bestimmung der Infektionsdosis.
• ?) 24 Std bebrütete Bouillonkulturen.
• ?) Die Normalöse.
• ?) Bestimmung des Gewichts der Bakterienmenge.
• ?) Bestimmung der Keimzahl durch Trübungsmessung.
• ?) Mikroskopische Keimzählverfahren.
• ?) Keimzählung durch Plattengußverfahren.
• c) Die Behandlung von Salmonellen zur Prüfung der Giftwirkung abgetöteter Bakterien, von bakterienfreien Filtraten und von Bakteriensubstanzen.
• ?) Abgetötete Bakterien.
• ?) Bakterienfreie Filtrate.
• ?) Extrakte und chemische Aufbereitung von Salmonellen.
• 3. Versuchstiere und Infektionsmethoden.
• a) Versuchstiere.
• b) Infektionsmethoden.
• ?) Infektion über den Verdauungstrakt.
• ?) Infektion über den Respirationstrakt.
• ?) Parenterale Infektion.
• ?) Andere Infektionsmethoden.
• c) Der Nachweis von Salmonellen im experimentell infizierten Tier und seinen Ausscheidungen.
• ?) Stuhl und Urin.
• ?) Blut.
• ?) Organe.
• ?) Quantitative Nachweismethoden (Keimzählmethoden).
• C. Der Verlauf der experimentellen Salmonellainfektion beim Tier.
• 1. Der Verlauf der experimentellen Infektion mit S. typhi, S. paratyphi A und S. paratyphi B.
• a) Die Infektion über den Verdauungstrakt.
• ?) Mäuse.
• ?) Meerschweinchen, Ratten, Kaninchen.
• ?) Affen.
• b) Die parenterale Infektion.
• ?) Meerschweinchen.
• ?) Kaninchen.
• 2. Der Verlauf der experimentellen Infektion mit anderen Salmonellen (S. typhimurium, S. enteritidis u. a.).
• ?) Meerschweinchen, Goldhamster, Ratten, Kaninchen.
• ?) Andere Tierarten.
• b) Die Infektion über den Respirationstrakt.
• c) Die parenterale Infektion.
• ?) Meerschweinchen, Goldhamster.
• ?) Ratten.
• ?) Geflügel.
• 3. Die Wirkung abgetöteter Salmonellen oder Salmonellenextrakte auf Versuchstiere.
• a) Einleitung.
• b) Allgemeinreaktion, Todesrate, Überlebenszeit, klinischer Verlauf.
• c) Die Wirkung auf Organe und Organsysteme.
• ?) Kreislauf.
• ?) Lunge.
• ?) Magen-Darm-Kanal.
• ?) Leber, Milz und lymphatisches System.
• ?) Geschlechtsorgane und andere innersekretorische Drüsen.
• ?) Zuckerstoffwechsel.
• ?) Blutbild.
• ?) Zentralnervensystem.
• III. Experimentelle Erzeugung von Krankheiten durch Shigellen.
• 1. Herkunft und Haltung von Shigellastämmen.
• 2. Vorbereitung der Infektionsdosis und Toxingewinnung.
• a) Die Züchtung.
• b) Die Behandlung der Shigellen zur Prüfung der Giftwirkung abgetöteter Bakterien, von Bakteriensubstanzen und Filtraten.
• ?) Abtötung der Bakterien.
• ?) Die Gewinnung des Endotoxins.
• ?) Die Gewinnung des Neurotoxins.
• C. Der Verlauf der experimentellen Shigelleninfektion beim Tier.
• 1. Die Infektion über den Verdauungstrakt.
• a) Mäuse.
• b) Kaninchen und Meerschweinchen.
• c) Affen.
• d) Andere Tiere.
• 2. Die parenterale Infektion.
• b) Kaninchen, Meerschweinchen, Affen.
• 3. Die Infektion der Schleimhäute.
• a) Die Blaseninfektion.
• b) Die conjunctivale Infektion.
• D. Die Wirkung abgetöteter Shigellen, von Shigellenextrakten und Toxinen auf Versuchstiere.
• 1. Die Wirkung des Endotoxins von Shigellen.
• a) Verteilung im Organismus.
• b) Verlauf der Vergiftung durch Endotoxine.
• c) Pathologisch-anatomische Befunde.
• 2. Die Wirkung des Neurotoxins von Sh. dysenteriae Typ 1.
• a) Kaninchen.
• b) Mäuse.
• c) Meerschweinchen.
• d) Ratten und Hamster.
• e) Katzen.
• f) Affen.
• g) Zusammenfassende Übersicht.
• Experimentelle Infektionen durch anaerobe Sporenbildner (Clostridien) der Gasbrandgruppe.
• II. Allgemeine Voraussetzungen für Infektionen durch anaerobe Keime.
• 1. In vitro-Bedingungen.
• 2. In vivo-Bedingungen.
• a) Gesundes Gewebe.
• b) Verändertes Gewebe.
• III. Die anaeroben Sporenbildner.
• A. Pathogene histotoxische Keime.
• 1. Clostridium perfringens (Cl. welchii).
• a) Bakteriologie.
• b) Natürliches Vorkommen und Pathogenität.
• c) Experimentelle Infektion.
• d) Andere Erkrankungen durch Cl. perfringens.
• 2. Clostridium septicum — Clostridium chauvoei.
• Clostridium septicum.
• Clostridium chauvoei.
• 3. Clostridium oedematiens — Clostridium novyi.
• 4. Clostridium histolyticum.
• B. Bedingt pathogene Keime.
• 1. Clostridium bifermentans — Clostridium sordelli.
• 2. Clostridium sporogenes.
• b) Vorkommen und Pathogenität.
• 3. Clostridium (Pl.) putrificum.
• C. Nur durch Toxine pathogene Keime.
• 1. Plectridium (Clostridium) tetani.
• 2. Clostridium botulinum.
• b) Natürliches Vorkommen.
• IV. Der Gasbrand.
• 1. Spezielle Voraussetzungen für den experimentellen Gasbrand.
• a) Art, Menge und Zustand der Keime.
• b) Versuchstiere.
• c) Ort der experimentellen Infektion.
• d) Zugabe von fördernden Substanzen.
• e) Schädigungen im Bereich der infizierten Wunde.
• 2. Experimenteller Gasbrand.
• a) Am kleinen Labortier.
• b) An großen Tieren.
• 3. Prophylaxe und Therapie des experimentellen Gasbrandes.
• a) Chemotherapeutika.
• b) Immunologische Methoden.
• c) Kombinierte Therapie.
• Experimentelle Infektionen mit grampositiven Haufenkokken (Micrococcaceae).
• Einführung.
• I. Staphylococcus aureus.
• A. Allgemeines.
• B. Experimentelle Pathogenität.
• C. Die Infektionen des Kaninchens mit Staphylococcus aureus.
• 1. Intravenöse Infektion.
• 2. Infektion der oberen Hautschichten.
• a) Intracutane Infektion.
• b) Infektion nach Verbrennung und anderen lokalen Schädigungen.
• 3. Subcutane Infektion.
• a) Infektion durch Injektion.
• b) Infektion nach Traumatisierung.
• 4. Intraartikuläre Infektion.
• 5. Infektionen des Auges.
• 6. Andere Infektionswege.
• D. Die Infektionen der Maus mit Staphylococcus aureus.
• 2. Intravenöse Infektion bei resistenzgeschwächten Tieren.
• 3. Intraperitoneale Infektion.
• 4. Intraperitoneale Infektion bei resistenzgeschwächten Tieren.
• 5. Intramuskuläre Infektion.
• 6. Subcutane Infektion.
• a) Infektion durch Suspensionen.
• b) Infektion durch Keimträger.
• 7. Intracerebrale Infektion.
• 8. Andere Infektionswege.
• a) Intrakardiale Infektion.
• b) Infektion von Leber und Milz.
• c) Intranasale Infektion.
• d) Orale Infektion.
• E. Die Infektionen der Ratte mit Staphylococcus aureus.
• 1. Pyelonephritis.
• 2. Sepsis.
• a) Nach Injektion von Fremdeiweiß.
• b) Nach Verbrennung.
• F. Die Infektionen des Meerschweinchens mit Staphylococcus aureus.
• 1. Intracutane Infektion.
• 2. Subcutane Infektion.
• a) Durch Suspensionen.
• b) Durch Keimträger.
• 3. Intratestikuläre Infektion.
• 4. Intravenöse Infektion.
• 5. Intrakardiale Infektion.
• 6. Intraperitoneale Infektion.
• G. Die Infektion des Goldhamsters mit Staphylococcus aureus.
• H. Die experimentellen Infektionen des Menschen mit Staphylococcus aureus.
• 2. Cutane Infektion.
• II. Gaffkya tetragena.
• C. Die Infektionen der Maus mit Gaffkya tetragena.
• 1. Intraperitoneale Infektion.
• D. Die Infektionen der Ratte mit Gaffkya tetragena.
• E. Die Infektionen des Meerschweinchens mit Gaffkya tetragena.
• F. Die Infektionen des Kaninchens mit Gaffkya tetragena.
• Experimentelle Infektionen mit gramnegativen Diplokokken (Neisseriaceae).
• I. Neisseria meningitidis.
• C. Die Infektionen des Kaninchens mit Neisseria meningitidis.
• 1. Verschiedene Infektionswege.
• 2. Subarachnoidale Infektion.
• D. Die Infektionen des Meerschweinchens mit Neisseria meningitidis.
• 1. Intrapleurale Infektion.
• 2. Intraperitoneale Infektion.
• 3. Subdurale Infektion.
• 4. Subarachnoidale Infektion.
• E. Die Infektionen der Maus mit Neisseria meningitidis.
• 3. Intraperitoneale Infektion mit Mucin.
• 4. Intraperitoneale Infektion mit Eigelb.
• 5. Intracerebrale Infektion.
• II. Neisseria gonorrhoeae.
• C. Die Infektion des Kaninchens mit Neisseria gonorrhoeae.
• Infektion der vorderen Augenkammer.
• D. Die Infektionen der Maus mit Neisseria gonorrhoeae.
• 1. Intraperitoneale Infektion mit Mucin.
• 2. Intraperitoneale Infektion mit Eigelb.
• E. Die Infektion der Ratte mit Neisseria gonorrhoeae.
• Intraperitoneale Infektion.
• III. Neisseria catarrhalis.
• IV. Veillonella alcalescens.
• 1. Subcutane Infektion.
• 3. Intravenöse Infektion.
• V. Veillonella parvula.
• Experimentelle Infektionen mit grampositiven Kettenkokken (Streptoeoeceae).
• I. Streptococcus pyogenes.
• C. Die Infektionen der Maus mit Streptococcus pyogenes.
• 1. Infektionen im Bereich der oberen Hautschichten.
• a) Sepsis.
• b) Lokale Infektion.
• c) Nephritis.
• 4. Intraperitoneale Infektion.
• a) Ohne Hilfsmittel.
• b) Mit Plasminogen und Streptokinase.
• 6. Intranasale Infektion.
• 7. Infektion durch Inhalation.
• D. Die Infektionen des Kaninchens mit Streptococcus pyogenes.
• a) Lokale bzw. septische Infektion.
• b) Nephritis.
• 3. Intramuskuläre Infektion.
• 5. Intraartikuläre Infektion.
• 6. Intravenöse Infektion.
• a) Allgemeininfektion.
• b) Arthritis.
• E. Die Infektionen des Meerschweinchens mit Streptococcus pyogenes.
• F. Die Infektion des Hundes mit Streptococcus pyogenes.
• Arthritis.
• G. Die Infektion der Ratte mit Streptococcus pyogenes.
• II. Streptococcus Aronson.
• C. Die Infektionen der Maus mit Streptococcus Aronson.
• 3. Wundinfektion.
• III. Enterokokken.
• C. Die Infektionen der Ratte mit Enterokokken.
• 1. Pyelonephritis (intravenöse Infektion).
• 2. Pyelonephritis (retrograde Infektion).
• D. Die Infektionen des Kaninchens mit Enterokokken.
• 2. Intracutane Infektion.
• E. Die Infektionen der Maus mit Enterokokken.
• Pyelonephritis.
• IV. Diplococcus pneumoniae.
• C. Die Pneumonie des Affen durch Diplococcus pneumoniae.
• 1. Infektion durch intratracheale Injektion.
• 2. Infektion durch intrabronchiale Applikation.
• D. Die Infektionen der Maus mit Diplococcus pneumoniae.
• 1. Percutane Infektion.
• 4. Subsutane Infektion.
• 6. Conjunctivale Infektion.
• 7. Orale Infektion.
• 8. Intraperitoneale Infektion.
• 9. Intravenöse Infektion.
• 10. Infektionen vom Respirationstrakt aus.
• a) Intrapulmonale Infektion.
• b) Infektion durch Inhalation.
• c) Infektion durch Instillation.
• E. Die Infektionen des Kaninchens mit Diplococcus pneumoniae.
• 5. Intravenöse Infektion.
• a) Septische Infektion.
• b) Osteomyelitis.
• 6. Infektionen des Auges.
• a) Conjunctivale Infektion.
• b) Corneale Infektion.
• c) Infektion der vorderen Augenkammer.
• 7. Intrapleurale Infektion.
• 8. Infektionen vom Respirationstrakt aus.
• b) Nasale Infektion.
• c) Intratracheale Infektion.
• F. Die Infektionen der Ratte mit Diplococcus pneumoniae.
• 1. Subsutane Infektion.
• 3. Infektion vom Respirationstrakt aus.
• G. Die Infektionen des Meerschweinchens mit Diplococcus pneumoniae.
• 1. Infektion der oberen Hautschichten.
• 5. Intrapleurale Infektion.
• 6. Infektion vom Respirationstrakt aus.
• 7. Andere Infektionswege.
• H. Die Infektionen des Hundes mit Diplococcus pneumoniae.
• 2. Infektionen vom Respirationstrakt aus.
• b) Intratracheale Infektion.
• c) Intrabronchiale Infektion.
• Anhang I. Experimentelle Erzeugung der Endokarditis.
• A. Einführung.
• B. Die experimentelle Endokarditis des Hundes.
• 1. Infektion durch Staphylokokken.
• 2. Infektion durch vergrünende Streptokokken.
• a) Nach operativer Vorbereitung.
• b) Ohne Vorbereitung.
• 3. Infektion durch hämolysierende Streptokokken.
• 4. Infektion durch anhämolytische Streptokokken.
• C. Die experimentelle Endokarditis des Kaninchens.
• a) Nach vorbereitenden Maßnahmen.
• b) Ohne vorbereitende Maßnahmen.
• 5. Infektion durch Enterokokken.
• D. Die experimentelle Endokarditis der Ratte.
• 1. Endokarditis bei der „Höhenratte“.
• 2. Endokarditis bei der unvorbereiteten Ratte.
• Anhang II. Experimentelle Erzeugung der Zahncaries.
• B. Caries bei der keimfreien Ratte.
• C. Caries beim konventionellen Hamster.
• Namenverzeichnis.