Modern Methods of Plant Analysis / Moderne Methoden der Pflanzenanalyse

Inhaltsverzeichnis

• — Contents..
• Aus der Einleitung zu den Bänden I—IV.
• From the Introduction to Volumes I—IV.
• Siliciumverbindungen.
• A. Übersicht und Vorkommen.
• B. Einlagerungsform und Funktion.
• C. Eigenschaften und Löslichkeit der Siliciumverbindungen.
• D. Herstellung von Kiesel-Gel-Nährböden und Silikatnährlösungen.
• I Kiesel-Gel-Platten.
• II. Silicat-Lösungen.
• III. Quarz-Lösungen.
• 1. Quarzwasser-Lösungen.
• 2. Quarz-Kohlenhydrat-Lösungen.
• E. Extraktion und Isolierung von Siliciumverbindungen.
• I. Fraktionierte Extraktion verschiedener Si-Verbindungen.
• 1. Gesamt-Silicat.
• 2. Säureempfindliches und organisches Silicat zusammen.
• 3. Organisches Silicat.
• 4. Auswertung.
• II. Isolierung organischer Kieselsäure Verbindungen.
• F. Qualitative Si-Bestimmungsmethoden.
• I. Mikronachweis durch Tüpfelanalyse.
• 1. Kieselsäure neben Phosphorsäure.
• 2. Phosphorsäure neben Kieselsäure.
• II. Mikroskopischer Kieselsäurenachweis im Aschebild (Spodogramm).
• III. Röntgenographischer Kieselsäure-Nachweis.
• IV. Tracer-Methodik.
• G. Quantitative Bestimmungsmethoden für Si-Verbindungen.
• I. Aufschluß des Untersuchungsmaterials.
• II. Colorimetrische Bestimmung.
• 1. Prinzip, Störfaktoren und Fehlerquellen.
• a) Prinzip.
• b) Störungen.
• c) Fehlerquellen.
• 2. Bestimmung von Silicat neben Phosphat.
• a) Methode nach Harrison u. Storr.
• b) Methode nach Milton.
• c) Methode nach Engel.
• d) Methode nach Baumann.
• 3. Getrennte Bestimmung von Kieselsäure neben Phosphorsäure.
• a) Methode nach Martin u. Doty.
• b) Modifikation nach Heinen.
• d) Serienversuche.
• III. Gravimetrische Bestimmung.
• Literatur.
• Determination of Sulfhydryl Groups.
• A. Classification and Distribution of Thiols.
• B. Chemical Properties of Thiols.
• I. Oxidation.
• II. Mercaptide Formation.
• III. Alkylating Agents.
• C. Qualitative Determinations of Thiols.
• I. Soluble Thiols.
• 1. General Test for Thiols—Nitroprusside Reaction.
• 2. General Test for Disulfides.
• 3. Test for Cystine, Cysteine and Cysteinylglycine.
• II. Fixed Thiols.
• 1. Nitroprusside Reaction.
• 2. Histochemical Identification.
• a) Bennet’s Reagent 1-(4-chloromercuriphenylazo)-Naphthol-2. “Mercury Orange”.
• b) Barrnett-Seligman Reagent. 2,2?-Dihydroxy-6,6?-Dinaphthyl Disulfide (DDD).
• 3. Chromatographic Separation.
• a) Extraction of Soluble Thiols.
• b) Localization of Thiol Imides on Paper.
• c) Procedures.
• D. Quantitative Estimations of Thiols.
• I. Titrimetry.
• 1. Oxidation of Soluble Thiols.
• a) Iodate Titration.
• b) Iodosobenzoic Acid Titration.
• 2. Oxidation of Protein Sulfhydryls.
• II. Colorimetric Methods.
• 1. Soluble Thiols.
• 2. Protein Thiols.
• III. Enzymatic Methods.
• IV. Amperometric Titrations.
• Special Techniques Used in Conjunction with Thiol Determination.
• a) Homogenization of Tissues.
• b) Reduction of Thiols.
• References.
• Phosphatide und Glykolipide.
• A. Einführung.
• I. Vorkommen komplexer Lipide.
• II Fermente des Lipidstoffwechsels.
• 1. Lecithinase A.
• 2. Lecithinase B.
• 3. Lecithinase C.
• 4. Lecithinase D.
• B. Gewinnung der Lipide.
• I. Extraktion.
• II. Reinigung der Lipidextrakte.
• C. Säulenchromatographie.
• I. Trennung in Stoffklassen.
• Fraktionierung von Lipidgemischen.
• II. Abtrennung einzelner Lipidkomponenten.
• Trennung von cholinhaltigen und nicht-cholinhaltigen Phosphatiden an der Al2O3-Säule.
• III. Bausteinanalyse.
• 1. Hydrolyse.
• a) Saure Hydrolyse.
• b) Alkalische Hydrolyse.
• 2. Identifizierung der Hydrolyseprodukte.
• 3. Quantitative Bestimmungen von Lipidbestandteilen.
• a) Mikrobestimmung von Phosphor.
• b) Bestimmung von Aminostickstoff.
• c) Bestimmung von Serin und Äthanolamin in DNP-Lipiden.
• d) Bestimmung von Serin und Äthanolamin.
• e) Bestimmung von Cholin.
• f) Bestimmung von Inosit.
• g) Bestimmung von höheren Fettaldehyden.
• h) Bestimmung des Gehaltes an veresterten Fettsäuren.
• D. Papierchromatographie.
• I. Qualitative Methoden.
• II. Quantitative Bestimmung.
• a) Imprägnierung des Papiers.
• b) Chromatographie.
• c) Phosphor-Bestimmung.
• III. Nachweisreaktionen.
• 1. Allgemeiner Nachweis von Lipiden.
• 2. NH2-haltige Gruppen.
• 3. Cholin.
• 4. Acetalphosphatide.
• 5. Ungesättigte Lipide.
• 6. Phosphorsäureester.
• E. Dünnschichtchromatographie.
• F. Papierelektrophorese.
• Natürlich vorkommende Acetylenverbindungen.
• A. Gewinnung und Identifizierung.
• I Methoden der Isolierung.
• 1. Allgemeines über das Arbeiten mit Polyacetylenverbindungen.
• 2. Gewinnung eines Extraktes.
• a) Höhere Pflanzen.
• b) Niedere Pflanzen.
• 3. Isolierung reiner Verbindungen.
• a) Chromatographische Trennung.
• b) Gegenstromverteilung.
• II. Konstitutionsermittlung.
• 1. Physikalische Methoden.
• 2. Reinheitskriterien.
• 3. Hydrierung und Gaschromatographie.
• 4. Weitere chemische Methoden.
• III. Zustand und Konzentration in der Pflanze.
• 1. Zustand.
• 2. Konzentration.
• B. Vorkommen und Verteilung im Pflanzenreich.
• I. Die bekannten natürlichen Acetylenverbindungen.
• II. Verteilung in höheren Pflanzen.
• Natürliche Chromone.
• A. Vorkommen der Chromone.
• B. Formeln und Eigenschaften der natürlichen Chromone.
• C. UV-und IR-Spektren von Chromonen.
• I. UV-Spektren.
• II. IR-Spektren.
• 1. Hydroxylgruppe.
• 2. ?-Pyron-Carbonylgruppe.
• D. Farbreaktionen und Chromatographie der Chromone.
• I. Farbreaktionen.
• 1. Alkali.
• 2. m-Dinitrobenzol.
• 3. Gibbs-Test.
• 4. Wasserstoffsuperoxyd.
• 5. Eisen(III)-chlorid.
• 6. Titan(III)-chlorid.
• II. Papier- und Dünnschichtchromatographie der Chromone.
• E. Isolierung der Chromone.
• II. Trennung.
• F. Pharmakologie und therapeutische Anwendung von Chromonen.
• G. Biogenese.
• Orchinol.
• B. Gewinnung und Isolierung von Orchinol.
• I. Kultur der Orchideen.
• II. Produktion.
• 1. Sterilisation.
• 2. Inkubation.
• III. Isolierung.
• 1. Extraktion der Knollen.
• 2. Reindarstellung.
• 3. Chemische und physikalische Eigenschaften.
• IV. Nachweis.
• 1. Biologischer Test.
• 2. Qualitativer Nachweis.
• 3. Quantitative Bestimmung.
• a) Auf Grund der Fluorescenz.
• b) Auf Grund der UV-Absorption.
• Humulones, Lupulones and Other Constituents of Hops.
• A. Sampling.
• B. The Hop Resins.
• I. Estimation of Total Resins.
• II. Estimation of Total Soft Resins.
• III. Analysis for ?-Acids.
• 1. Extraction of the ?-Acids.
• 2. Polarimetric Evaluation.
• 3. Estimation by Spectrophotometry.
• 4. Conductometric Analysis.
• IV. Estimation of Individual ?-Acids.
• 1. Analysis by Countercurrent Distribution.
• 2. Estimation by Gas Chromatography.
• 3. Further Methods for Resolution of ?-Acids.
• V. Analysis for ? Acids.
• 1. Spectrophotometric Analysis for ?-Acids.
• 2. Estimation of Individual Lupulones.
• Gas Chromatography Method.
• VI. Significance of Results of Resin Analyses.
• C. Essential Oils of Hops.
• Lichen Substances.
• A. Microchemical Investigation of Lichen Substances.
• I. Thalline Reactions.
• II. Microchemical Examination of Lichens under Microscope.
• 1. Procedure.
• 2. Some Examples of Microchemical Examination.
• III. Paper Chromatography of Lichen Substances.
• Procedure in the Paper Chromatography of Lichen Substances.
• B. General Procedures of Extraction, Isolation and Purification of Lichen Substances.
• C. Structural System of Lichen Substances.
• 1. ?-Lactonic Acid Derivatives, and Di-and Tri-basic Fatty Acids.
• 2. Triterpenoids.
• 3. Polyhydric Alcohols.
• 4. Aliphatic Sulfur Containing Compound.
• 5. Pulvinic Acid Derivatives.
• 6. Lichen Depsides.
• 7. Depsone.
• 8. Depsidones.
• 9. Quinones.
• 10. Xanthone Derivative.
• 11. Chromanone Derivative.
• 12. Dibenzofuran Derivatives.
• 13. Diketopiperazine Derivative.
• D. Experimental Procedures for the Chemical Investigation of Lichen Substances.
• I. Extraction, Isolation, and Purification.
• 1. Depsides, and Depsidones.
• 2. Lichen Triterpenoid.
• 3. Quinones.
• 4. Dibenzofuran Derivatives.
• II. Degradation Reactions of Lichen Substances.
• 1. Hydrolytic Cleavage of Depsides.
• 2. Cleavage of Depsidones.
• III. Synthesis of Lichen Depsides.
• Kinetin and Kinetin-Like Compounds.
• A. Biological Assay Systems.
• 1. Tobacco Wound Tissue System.
• 2. Soybean Callus Tissue System.
• 3. Radish Leaf Disk Test.
• 4. Bean Leaf Disk Test.
• 5. Germination Tests.
• 6. Chlorophyll Preservation Test.
• 7. Formation of Buds in Mosses.
• 8. Formation of Buds in Tobacco Tissues.
• B. Chemical and Physical Properties.
• Gibberelline.
• A. Chemische Eigenschaften der Gibberelline.
• B. Isolierung der Gibberelline aus Pflanzen und aus Substraten von Pilz-Kulturen.
• I. Isolierung aus Gibberella-Kulturen.
• II. Isolierung aus höheren Pflanzen.
• 1. Isolierung nach West u. Phinney (1959) und Lang (1960).
• 2. Isolierung nach Cross, Galt u. Mitarb. (1962).
• C. Chemische und physikalisch-chemische Nachweis-Methoden.
• D. Biologische Nachweis-Methoden.
• I. Oryza-Test.
• II. Zea-Test.
• III. Pisum-Test.
• IV. Pharbitis-Test.
• V. Weitere Testpflanzen.
• VI. Nachweis mit abgeschnittenen Pflanzenteilen.
• VII. Intensität der Wirkung der einzelnen Gibberelline auf verschiedene Test-Pflanzen.
• E. Vorkommen der Gibberelline im Pflanzenreich.
• I. Verbreitung der Gibberelline.
• II. Mengen von Gibberellinen in höheren Pflanzen auf Grund biologischer Nachweise.
• Pflanzliche Toxine.
• Allgemeiner Teil.
• A. Niedermolekulare Stoffe.
• B. Stoffe mit einem mittleren Molekulargewicht.
• C. Hochmolekulare, nichtenzymatische Stoffe.
• D. Enzyme.
• Spezieller Teil.
• I. Isolierung und Nachweis einzelner Toxine.
• 1. Alternariasäure.
• 2. Cochliobolin.
• 3. Diaporthin.
• 4. Enniatine.
• 5. Fusarinsäure.
• 6. Fusarubin.
• 7. Javanicin.
• 8. Lycomarasmin.
• 9. Pseudomonas solanacearum-Polysaccharid.
• 10. Skyrin.
• 11. Victorin.
• 12. Wildfeuer-Toxin.
• II. Pflanzenpathogene Mikroorganismen, in deren Kulturflüssigkeiten phytotoxische Stoffe vorhanden sind.
• Bakterien.
• Pilze.
• Phytagglutinine.
• A. Einleitung.
• I. Begriff, Nomenklatur.
• II. Vorkommen.
• B. Chemische Natur und Eigenschaften.
• C. Methoden der Phytagglutiningewinnung.
• I. Phytagglutinine aus den Samen der Cormophytenarten.
• 1. Allgemeine Bemerkungen.
• 2. Rohextrakte.
• a) Originalmethode nach Renkonen.
• b) Methode von Boyd und Reguera.
• c) Methode von Li und Osgood.
• d) Methode von Tobiška.
• e) Ultraschallmethode nach Luká? i.
• 3. Gereinigte bzw. angereicherte Extrakte.
• a) Dialyse.
• b) Reinigung nach Renkonen und Koulumies.
• c) Isolation der Phytagglutinine als Mucoproteide nach Rigas und Osgood.
• d) Isolation der Phytagglutinine als Proteine nach Rigas und Osgood.
• e) Isolation der Phytagglutinine durch Äthanolfällung nach Bird.
• f) Isolation der Phytagglutinine durch Agar-Elektrophorese nach Herzog und Sou? ek.
• g) Andere Methoden.
• II. Phytagglutinine aus anderen Teilen der Cormophyta.
• a) Blätter.
• b) Zweige.
• c) Wurzel.
• d) Milchsaft (Latex).
• e) Knollen.
• III. Phytagglutinine aus höheren Pilzen (Ascomycetes, Basidiomycetes).
• IV. Konservierung der Extrakte.
• D. Methoden der Phytagglutinin-Testung.
• I. Komplette (direkte) Phytagglutinine.
• a) Standard-Methode.
• b) Tropfenmethode.
• c) Objektträgermethode.
• II. Inkomplette (indirekte) Phytagglutinine.
• a) Nachweis der inkompletten Phytagglutinine mittels eines „Supplementmilieus“.
• b) Partielle Verdauung der roten Blutkörperchen durch Papain oder Trypsin.
• III. Nachweis von sehr kleinen Phytagglutinin-Mengen.
• Coombs-Test.
• E. Absorption der wenig spezifischen Extrakte.
• F. Inhibitoren der Phytagglutination.
• I. Einleitung, Vorkommen.
• II. Methoden der Testung.
• G. Titration des Phytagglutininextraktes nach Li und Osgood zum Zwecke der Leukocytenseparation aus dem Blute.
• Isolierung und Analyse von Bakterienzellwänden.
• A. Organisation und Zusammensetzung bakterieller Zellwände.
• B. Isolierung bakterieller Zellwände.
• I. Mechanische Zerkleinerung nach Salton und Horne.
• II. Mechanische Zerkleinerung und Reinigung mittels proteolytischer Enzyme nach Cummins und Harris.
• III. Zerkleinerung mit Ultraschall und proteolytische Reinigung nach M. Ikawa und E. E. Snell.
• IV. Zerkleinerung mittels des Zentrifugenaufsatzes nach Shockman et al..
• V. Kombinierte Zerkleinerung mittels Ultraschall in Gegenwart von Glas-Teilchen.
• VI. Gradienten-Sedimentierung in Saccharose.
• VII. Autolyse und proteolytische Verdauung.
• C. Physikalische Eigenschaften und Kriterien der Reinheit.
• D. Chemische Analyse der Hauptbestandteile.
• I. Aminosäuren.
• 1. Qualitative Bestimmung.
• 2. Quantitative Bestimmung.
• 3. Bestimmung von D-Aminosäuren.
• a) d-Alanin.
• b) d-Glutaminsäure.
• c) ?-?-Diaminopimelinsäure (DAP).
• d) ?-(Aminosuccinyl-l-Lysin).
• 4. Bestimmung der endständigen Aminosäuren mit 2,4-Dinitrofluorbenzol (DNFB).
• II. Aminozucker.
• 1. Morgan-Elson-Methode.
• 2. Elson-Morgan-Methode.
• a) Colorimetrische Bestimmung.
• b) Papierchromatographischer Nachweis.
• III. Neutralzucker.
• IV. Teichonsäuren.
• a) Isolierung.
• b) Saure Hydrolyse.
• c) Basische Hydrolyse.
• d) Papierchromatographic.
• E. Analyse mit Hilfe von Enzymen.
• I. Lysozym.
• 1. Mikrococcus lysodeicticus.
• 2. Isolierung von dialysierbaren Zellwand-Mucopeptiden aus intakten Mikroorganismen.
• 3. Kinetische Studien mit Lysozym.
• 4. Lysozym an Gram-negativen Bakterien.
• 5. Darstellung der „ghosts“ mit Hilfe von Lysozvm unter osmotischem Schutz.
• 6. Bildung von Spheroblasten in Gegenwart von Versene, Lysozvm und Spermin.
• II. Phagen-Enzyme.
• F. Analyse der Biosynthese mit Hilfe von Isotopen.
• G. Zusammenfassung und Ausblick.
• I. General Methods of Enzymology.
• Der Nachweis enzymatischer Aktivität.
• I. Definition.
• II. Chemische Natur der Enzyme.
• III. Eigenschaften der Enzyme.
• B. Suche nach einem Enzym.
• C. Gruppenteste.
• Allgemeine Charakterisierung eines Enzyms.
• A. Die Reaktionsspezifität.
• B. Bestimmung der optimalen Reaktionsbedingungen.
• C. Zur Bestimmung der Stabilität des Enzyms.
• D. Die Substratspezifität.
• E. Bestimmung der Enzymkonzentration.
• F. Die Lokalisationsbestimmung der Enzyme.
• Manometrische Methoden.
• Spektroskopische Methoden.
• Thunberg-Technlk (Methylenblau-Methode).
• 1. Prinzip.
• 2. Technik der Thumberg-Methode.
• a) Das Vakuumrohr.
• b) Der Thermostat.
• c) Die Indicator-Lösung.
• d) Enzymlösungen.
• e) Pufferlösungen.
• f) Substratlösungen.
• 3. Durchführung des Entfärbungstestes.
• 5. Fehlerquellen.
• 6. Verwandte Methoden.
• Interpretation of Results.
• A. No Detectable Activity: Enzyme Absent.
• B. Partial or No Activity: Enzyme Present.
• I. Present as Inactive Precursor.
• II. Enzyme Present: Partially Active or Inactive under Assay Conditions.
• 1. Adsorption.
• 2. Inhibition.
• 3. Disruption of Cellular Organisation.
• 4. Activity Dependent on Spontaneous Change in Substrate.
• 5. Physical State of Substrate.
• 6. Miscellaneous Factors.
• C. Present but giving High Assay.
• D. Present in widely Varying Amounts.
• E. One Activity from More than One Enzyme or More than One Activity from One Enzyme.
• F. Conclusions that May be Drawn from the Presence of an Enzyme.
• II. General Methods of Preperation and Purification.
• General Methods of Preparation.
• A. Culture of Material.
• I. Higher Plants.
• II. Algae.
• III. Bacteria.
• 1. Pure Cultures.
• 2. Enrichment Cultures.
• IV. Fungi.
• B. Preparation of Cell-Free Extracts.
• II. Microorganisms.
• 1. Lytic Procedures.
• a) Autolysis.
• b) ?-Lysis by Bacteriophage.
• c) Enzymic and Chemical Lysis.
• 2. Mechanical Disruption.
• a) Sound Waves.
• b) Agitation with Glass Beads.
• c) Mill Grinding.
• d) Mechanical or Hand Grinding with Abrasives.
• e) Mechanical Pressure.
• 3. Dried Cell Preparations.
• C. Isolation of Particles.
• I. Centrifugation.
• 1. Differential Centrifugation.
• 2. “Layering” and Density-Gradient Centrifugation.
• II. Isolation of Nuclei.
• 1. Isolation in Non-Aqueous Medium.
• 2. Isolation in Aqueous Medium.
• III. Isolation of Chloroplasts.
• 1. Higher Plants.
• a) Isolation of Chloroplasts in Non-Aqueous Medium.
• b) Isolation of Chloroplasts in Aqueous Medium.
• 2. Algae and Bacteria.
• IV. Isolation of Mitochondria.
• 1. Etiolated and Non-Chlorophyllous Tissues.
• 2. Pigmented Tissues.
• 3. Microorganisms.
• V. Microsomes and Other Particulate Preparations.
• VI. Intracellular Localization of Enzymes in Subcellular Particles.
• 1. Light and Electron Microscopv.
• 2. Chemical Tests.
• 3. Enzymic Tests.
• 4. Functional Integrity of the Subcellular Particles.
• General Aspects of Enzyme Purification and Characterization.
• I. Precipitation Methods.
• 1. Precipitation by Inorganic Salts.
• 2. Precipitation by Organic Solvents.
• II. Selective Denaturation of Impurities.
• III. Gel Filtration.
• IV. Preparative Electrophoresis.
• 1. Zone Electrophoresis in Supporting Media.
• 2. Continuous Electrophoresis.
• V. Adsorption Methods.
• VI. Liquid-Liquid Partition.
• VII. Criteria of Homogeneity.
• 1. Physical-Chemical Methods.
• 2. Immunological Methods.
• VIII. Characterization of Pure Enzymes.
• IX. Concluding Remarks.
• Purification of Enzymes by Ion Exchange Chromatography.
• I. Ion Exchange Chromatography of Proteins.
• 1. Principles of Ion Exchange Chromatography.
• 2. Different Types of Ion Exchangers.
• II. Methods of Development.
• 1. Starting-buffer Development.
• 2. Gradient Development.
• 3. Step-wise Development.
• a) Steps with Negligible Interaction between Developer and Adsorbent.
• b) Steps with an Evident Interaction between Developer and Adsorbent.
• III. Experimental Technique.
• 1. Equipment for Protein Chromatography.
• 2. Choice of Buffers.
• 3. Methods of Analysis.
• 4. Pretreatment, Packing and Regeneration of Column Materials.
• 5. Planning and Performance of Experiments.
• IV. Interpretation of Chromatograms.
• 1. Chromatographic Homogeneity.
• 2. Artificial Zoning of a Single Substance.
• 3. Heterogeneity of Enzymes.
• V. Concluding Remarks.
• Die Analyse von Enzymen im Boden.
• I. Prmzip des Nachweises von Bodenenzymen.
• II. Entnahme und Vorbereitung der Bodenproben.
• III. Der qualitative Nachweis von Bodenenzymen.
• 1. Qualitativer Nachweis von Saccharase.
• 2. Qualitativer Nachweis von Amylase sowie ?- und ?-Glykosidasen.
• 3. Qualitativer Nachweis von Proteinasen, Urease und Phosphatasen.
• IV. Methoden für die quantitative Bestimmung von Enzymaktivitäten.
• 1. Saccharaseaktivität.
• 2. ?-Glucosidase-Aktivität.
• 3. Aktivität von ?-Glucosidase, ?- und ?-Galaktosidase sowie Amylase.
• 4. Ureaseaktivität.
• 5. Protease-Aktivität.
• 6. Phosphatase-Aktivität (Phospho-Monoesterase).
• V. Bestimmungsmethoden für weitere Enzyme im Boden.
• Inhibition and Activation of Enzymes.
• A. Introduction.
• B. Inhibition.
• I. Non-Competitive Inhibitors.
• 1. Inhibitors of Groupings on Enzyme Molecules.
• a) —SH Inhibitors.
• b) S—S Inhibitors.
• 2. Inhibitors of Enzymes and Enzyme Systems Affecting Primarily Groups of Enzymes Having Definite Functions.
• a) Inhibitors of Esterases.
• b) Inhibitors of Oxidizing Enzymes.
• c) Inhibitors of Protein Synthesis.
• II. Competitive Inhibitors.
• C. Activation.
• I. Inorganic Activators.
• II. Organic Activators.
• D. Latency.
• III. Estimation of Metabolites by Enzymes.
• Enzymic Assays of Amino Acids and Keto Acids.
• I. Amino Acids.
• 1. l-Aspartic Acid.
• a) Manometric Methods.
• b) Spectrophotometric Method.
• 2. l-Glutamic Acid.
• 3. l-Glutamine.
• 4. l-Asparagine.
• 5. l-Arginine.
• 6. l-Histidine.
• 7. l-Lysine.
• 8. l-Tyrosine and l-Phenylalanine.
• 9. l-Ornithine.
• 10. l-Tryptophan.
• 11. l- and d-Threonine.
• II. Keto Acids.
• 1. Pyruvic Acid.
• 2. Hydroxypyruvic Acid.
• 3. Ketoglutaric Acid.
• Enzymatische Bestimmung von Metaboliten.
• A. Allgemeine Übersicht.
• Optischer Test.
• B. Beschreibung der einzelnen Bestimmungen.
• I. Coenzyme.
• 1. Pyridoxal-Phosphat.
• 2. Coenzym A.
• 3. Diphospho-pyridin-nucleotid und Triphospho-pyridin-nucleotid (oxydierte und reduzierte Form).
• 4. Thiamin-Pyrophosphat.
• 5. Flavinadenin-Dinucleotid (FAD).
• 6. Flavin-Mononucleotid (FMN).
• II. Adenylsäuren.
• 1. Bestimmung von ATP, ADP und AMP.
• 2. Adenosin-di-phosphat und Phospho-enol-brenztraubensäure (PBTS).
• 3. Adenosin-Monophosphat.
• III. Acetaldehyd.
• IV. Methylglyoxal.
• V. Äthylalkohol.
• VI. Organische Säuren.
• 1. l(+)-Milchsäure.
• 2. l(?)-Äpfelsäure.
• 3. Isocitronensäure.
• VII. Zucker und Zuckerphosphate.
• 1. Glucose, Fructose, Glykogen.
• 2. Glucose-6-phosphat und Fructose-6-phosphat.
• 3. Dioxyacetonphosphat, 3-Phosphoglycerinaldehyd und Fructose-1,6-Diphosphat.
• 4. Ribose-5-phosphat, Xylulose-5-phosphat und 3-Phosphoglycerinaldehyd.
• VIII. Glycerin und l(?)-Glycerophosphat.
• Sachverzeichnis (Deutsch-Englisch).
• Subject Index (English-German).